Domů >> Novinky >> Encyklopedie firemních informací>> Nové objevy výzkumu LNP! Fosfolipidy nejsou pouze „pomocnými lipidy“, ale také „duchovním kormidelníkem“ pro cílené dodávání do orgánů.

Nové objevy výzkumu LNP! Fosfolipidy nejsou pouze „pomocnými lipidy“, ale také „duchovním kormidelníkem“ pro cílené dodávání do orgánů.

【Úvod】V současné době patří lipidové nanocáry (LNPs) k nejvyspělejším systémům pro dodávku léčiv v oblasti klinických výzkumů nukleových látek; díky mechanismům jako je ochrana nukleových kyselin a podpora buněčného příjmu poskytují klíčovou podporu mRNÁ terapiím. Tradiční LNPs jsou tvořeny čtyřmi typy složek: ionizovatelnými lipidy, polyethylenglykolizovanými lipidy, cholesterolem a pomocnými lipidy (fosfolipidy). Dlouhodobě byli fosfolipidy považováni výzkumníky za strukturální pomocné složky LNPs, zodpovědné za mediaci samoskládání LNPs a udržování stability jejich membrány; avšak nedávno publikovaná studie v předním časopise v oblasti biomateriálů „Biomaterials“[1] prokázala, že fosfolipidy přispívají klíčovou funkcí k membránové fuzi selektivně transportovaných lipidových nanocár (SORT LNPs), k jejich unikání z organismu i k efektivitě transfekce. Tento výzkumný poznatek odhalil, že funkční role fosfolipidů v LNPs již přesahuje jejich tradiční pozici jako „pomocných lipidů“ ve struktuře
【Klíčová slova】 LNP lipidové nanočástice, organická cílená dodávka fosfolipidů, cílená dodávka SORT LNP, systém dodávky mRNA léků, výzkum funkcí fosfolipidů LNP

Fosfolipidy výrazně zvyšují interakci mezi LNPs a endozomální membránou

Tým výzkumníků použil metodu detekce Fosterovy rezonanční energie přenosu (FRET) k hodnocení vlivu obsahu fosfolipidů na interakci mezi LNPs a endozomální membránou. Výsledky ukázaly, že přídavek fosfolipidů v závislosti na formulaci výrazně zlepšuje fúzi s endozomální membránou.

Fosfolipidy zvyšují in vitro efektivitu transfece buněk pomocí LNPs

Tým výzkumníků transfekoval mRNA luciferázy do buněk HEK293 a Hela pomocí LNPs s různým obsahem fosfolipidů. Aktivita luciferázy byla měřena detekcí průměrné intenzity světelného záření, což umožnilo kvantitativně vyhodnotit únik z endozomů a expresi mRNA v buňkách. Výsledky ukázaly, že LNPs s nulovým obsahem fosfolipidů dosahovaly nižší efektivity transfece, zatímco s rostoucím obsahem fosfolipidů se efektivita výrazně zvyšovala.

Obrázek 3 Porovnání efektivity transfece buněk Hela pomocí LNPs s různým obsahem fosfolipidů [1]

Fosfolipidy zvyšují in vivo efektivitu dodávky mRNA pomocí SORT LNPs

Tým výzkumníků injikoval LNPs s gradientním obsahem fosfolipidů obsahující mRNA lidského erytropoietinu myším C57BL/6 ve věku 6–8 týdnů a hodnotil efektivitu transfece měřením sekrece proteinů produkovaných transfekovanými buňkami. Výsledky ukázaly, že s rostoucím obsahem fosfolipidů se zvyšuje efektivita transfece. Je důležité poznamenat, že optimální poměr přídavku fosfolipidů je závislý na formulaci.

Obrázek 4 Porovnání in vivo expresních účinků mRNA využívajících LNPs s různým obsahem fosfolipidů [1]

Obsah fosfolipidů ovlivňuje morfologii LNPs

Tým výzkumníků pomocí kryogenní elektronové mikroskopie vizuálně prokázal, jak fosfolipidy přetvářejí nanostrukturu LNPs.

Obrázek 5 Kryogenní elektronová mikroskopie LNPs s různým obsahem fosfolipidů [1]

V případě hepatických SORT LNPs vedlo bohatější zásobení fosfolipidy k vytvoření poluspořádaného lipidového jádra; tento vystupující strukturální prvek může indikovat vyšší fúzní aktivitu LNPs.

V případě pulmonálních SORT LNPs vedlo zvýšení obsahu fosfolipidů ke změně z neuspořádané jednovrstvé struktury na vícevrstvou puklinovou strukturu, což mohlo ovlivnit expozici SORT lipidů na povrchu částic.

V případě splenických SORT LNPs byly částice při nulovém obsahu fosfolipidů ostré a nepravidelné, zatímco jejich přídavek přinesl pravidelnější a kulatější tvar, čímž se zvýšila stabilita membrány.

Závěr

Tato studie změnila dosavadní pojetí toho, jaké funkce plní fosfolipidy v pokrokových systémech dodávky LNPs. Fosfolipidy již nejsou pouze „pomocnými lipidy“ udržujícími strukturální stabilitu, ale multifunkčními „molekulárními kormidly“, které řídí dynamiku fúze membrán LNPs, efektivitu úniku z endozomů, buněčnou absorpci, morfologii nanostruktur i konečnou specifičnost cílových orgánů. Tato studie naznačuje, že při navrhování další generace LNPs je nutné považovat fosfolipidy za klíčový funkční designový parametr, nikoli pasivní strukturální složku. S hlubším porozuměním vzájemným interakcím mezi lipidy se terapie LNPs specifické pro jednotlivé orgány, přizpůsobené na míru, budou stávat z vize rychleji skutečností.

Reference:

[1]Guerrero, Erick D a kol. „Investigace funkčních přínosů fosfolipidů v selektivně cílových lipidových nanopartikulích.“ Biomaterials, svazek 326 (2026): 123671.

Další čtení:

Moderní farmaceutická společnost Guangzhou Baiyunshan Hanfang se věnuje poskytování celé řady podpory od osvědčených pomocných látek až po inovativní kandidátské materiály pro vývoj tukových emulzí, LNP a liposomálních léčivých přípravků po celém světě, čímž napomáhá technologickým průlomům a rozvoji biomedicínského průmyslu!

Tabulka 1 Seznam některých injekčních lipidových produktů společnosti

Název produktu

Standard

Stav

DSPC
Disstearoylphosphatidylcholin

Vnitřní standard

F20250000349
I stav

DPPC
Dispalmyloylphosphatidylcholin

Vnitřní standard

F20240000632
I stav

Trioctanoin
Triglycerid oktanové kyseliny

Vnitřní standard

R&D

Polyene Phosphatidyl Choline
Mnohoenový fosfatidylcholin (injekční/orální)

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

DOPC
Dioléylfosfatidylcholin

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

DMPC
Dimyristoylphosphatidylcholin

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

DEPC
Diacetylester fosfatidylcholinu

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

EPG
Egg yolk phosphatidyl glycerol

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

DSPG-Na
Disstearoylphosphatidylglycerol sodný

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

DSPG-Na
Disstearoylphosphatidylglycerol sodný

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

DPPG-Na
Dispalmyloylphosphatidylglycerol sodný

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

DOPG-Na
Dioléylphosphatidylglycerol sodný

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

DMPG-Na
Dimyristoylphosphatidylglycerol sodný

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

MPEG2000-DSPE
Phosphatidyl ethanolamine

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

DSPE
Disstearoylphosphatidyl ethanolamine

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

DOPE
Dioléylphosphatidyl ethanolamine

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

DPPE
Dispalmyloylphosphatidyl ethanolamine

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

DMPE
Dimyristoylphosphatidyl ethanolamine

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj

Sphingomyelin/SM
Sfingomyelin

Vnitřní standard

R&D
Rozvoj